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Qui introduciamo strumenti basati su dispositivi fluidici in combinazione con microscopia e conteggio citometrico del flusso per ottenere I BTC. Abstract Comprendere il trasporto, la dispersione e la deposizione di microrganismi nei mezzi porosi è un compito scientifico complesso che comprende argomenti diversi come l'idrodinamica, l'ecologia e l'ingegneria ambientale. La modellazione del trasporto batterico in ambienti porosi su diverse scale spaziali è fondamentale per prevedere meglio le conseguenze del trasporto batterico, ma i modelli attuali spesso non riescono a scalare da laboratorio a condizioni sul campo.

Qui introduciamo strumenti sperimentali per studiare il trasporto batterico in mezzi porosi su due scale spaziali. Lo scopo di questi strumenti è quello di ottenere osservabili macroscopici come curve rivoluzionarie o profili di deposizione di batteri iniettati in matrici porose trasparenti. Su scala più ampia, la citometria a flusso è combinata specifiche fori filettati btc un distributore robotico autoprofeso per ottenere curve rivoluzionarie.

Illustriamo l'utilità di questi strumenti per capire meglio come i batteri vengono trasportati in complessi mezzi porosi come la zona iporeica dei corsi d'acqua. Poiché questi strumenti forniscono misurazioni simultanee su scale, aprono la strada a modelli basati su meccanismo, di fondamentale importanza per l'upscaling.

Introduction Log in or Start trial to access full content. A questo proposito, i batteri sono stati per lo più trattati come particelle neimodelli di trasporto 4 e processi come filtrazione, deformazione, sedimentazione gravitazionale o rimobilitazione da biofilm sono stati identificati come fattori di ritenzione o trasporto di microbi5. Gli ambienti porosi naturali, come quelli che si trovano nella zona iporeica di torrenti e fiumi, sono densamente colonizzati da diverse comunità di microbi biofilm-forming6.

I biofilm formano strutture che modificano il flusso e quindi il trasporto e la dispersione dei batteri nella faseliquida 7,8. Su scale spaziali più grandi, la crescita del biofilm devia i percorsi di flusso portando anche all'intasamento parziale dei pori e, quindi, alla creazione di condizioni di flusso ancora più canalizzate ed eterogenee Questo è un modo efficace per aumentare l'esplorazione di nuovi habitat.

Una varietà di strumenti si avvale dello studio del trasporto di batteri e particelle mobile e non mobile in mezzi piattaforma di trading bitcoin. I modelli numerici hanno grandi capacità predittive importanti per le applicazioni, tuttavia sono spesso limitati da ipotesi intrinseche4. Gli esperimenti su scaladi laboratorio 13,14 combinati con la modellazione della curva di svolta BTC hanno fornito specifiche fori filettati btc spunti sull'importanza delle proprietà specifiche fori filettati btc superficie cellulare batterica per l'efficienza dell'incollaggio Tipicamente, i BTC cioè, serie volte serie di concentrazione di particelle in un luogo fisso sono ottenuti attraverso rilasci a velocità costante e misurazione del specifiche fori filettati btc di cellule al deflusso del dispositivo sperimentale.

In questo contesto, i BTC riflettono la dinamica di advezione-dispersione dei batteri nella matrice porosa e possono essere estesi da un termine di affondamento che rappresenta l'attaccamento. Tuttavia, la modellazione dei BTC da sola non risolve il ruolo dell'organizzazione spaziale del substrato poroso o del biofilm per i processi di trasporto. Altri osservabili macroscopici come la dispersività o i profili di deposizione hanno dimostrato di fornire informazioni importanti sulla distribuzione spaziale o sulle particelle trattenute o sulle comunità in crescita.

La microfluidica è una tecnologia che consente di studiare il trasporto in mezzi specifiche fori filettati btc mediante indagine di microscopia9,12,16, e ad eccezione di un recente lavoro10, i sistemi sperimentali sono tipicamente vincolati a una singola scala di lunghezza di risoluzione, cioè la scala dei pori o l'intera scala del dispositivo fluido.

Qui, introduciamo una suite di metodi combinati per studiare il trasporto di batteri motili e non motili in paesaggi porosi su diverse scale. Combiniamo le osservazioni del trasporto batterico su scala dei pori con informazioni su larga scala, attraverso l'analisi BTC.

I dispositivi microfluidici costruiti con litografia morbida utilizzando polidimetilsilossano PDMS sono bio-compatibili, resistenti a una vasta gamma di sostanze chimiche, consentono la replicabilità a bassi costi e forniscono un'eccellente trasparenza ottica e una bassa autofluorescenza critica per l'osservazione microscopica.

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La microfluidica a base di PDMS è stata precedentemente utilizzata per studiare il trasporto di microbi incanali semplici 17 o in geometrie più complesse Tuttavia, tipicamente gli esperimenti di microfluidica si concentrano su orizzonti a breve termine e l'osservazione microscopica dell'epi-fluorescenza delle cellule viventi è comunemente limitata a ceppi geneticamente modificati ad esempio, ceppi taggati dalla GFP.

Qui presentiamo strumenti per studiare il trasporto batterico utilizzando dispositivi microfluidici basati su PDMS in combinazione con microscopia e dispositivi più grandi fabbricati da poli metacrilato metile PMMA, noto anche come plexiglass in combinazione con citometria a flusso.

Mentre il dispositivo microfluidico fornisce un ambiente più controllato, il dispositivo più grande consente esperimenti per lunghi periodi di tempo o utilizzando comunità batteriche naturali. Il conteggio delle microscopie ad alta risoluzione temporale in un'area dedicata viene utilizzato per ottenere BTC nel dispositivo microfluidico basato su PDMS. Per ottenere il conteggio delle celle per la modellazione BTC dal dispositivo basato su PMMA, introduciamo un distributore automatico di liquidi autocostruito in combinazione con la citometria a flusso.

In questa configurazione, le cellule passano il dispositivo fluido e vengono erogate consecutivamente in 96 piastre di pozzo. Il fissatore nei pozzi previene la crescita e facilita la colorazione del DNA per l'enumerazione citometrica a flusso a valle. Per prevenire la crescita batterica durante gli esperimenti di trasporto utilizziamo un mezzo minimo termo buffer di motilità. Poiché i protocolli per la preparazione di dispositivi fluidici su scale diverse sono prontamente disponibili, introduciamo solo brevemente le tecniche per produrre tali dispositivi e ci concentriamo piuttosto sulle procedure sperimentali per registrare i BTC.

Allo stesso modo, esistono varie routine per l'enumerazione citometrica del flusso dei microbi e gli utenti richiedono conoscenze esperte per interpretare i risultati ottenuti dalla citometria bitcoin adder 2021 flusso.

Reportiamo il nuovo uso di dispositivi microfluidici in combinazione con l'imaging microscopico per registrare Specifiche fori filettati btc BTC di cellule con tag fluorescenti.

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Alla scala dei pori, le velocità e le traiettorie locali si ottengono attraverso l'elaborazione delle immagini. Inoltre, dimostriamo l'uso di un dispositivo fluido a base di PMMA in combinazione con il conteggio flusso-citometrico per osservare il trasporto batterico di cellule mobili e non mobili in ambienti porosi colonizzati da un biofilm a flusso nativo. Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian. Protocol Log in or Start trial to access full content.

Rimuovere il specifiche fori filettati btc e aggiungere un tampone di motilità da 1 mL al pellet. Vortice brevemente per omogeneizzare il campione. Diluire per raggiungere la concentrazione cellulare desiderata, ad esempio 5 x mL Per esperimenti che coinvolgono comunità naturali, come quelle derivate da corsi d'acqua, preparare un mezzo di coltivazione non selettivo.

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Ad esempio, utilizzare acqua di flusso filtrata sterile e autoclavata o un mezzo d'acqua a flusso artificiale modificato con una specifiche fori filettati btc fonte di carbonio mezzo LB. Preparazione di un dispositivo microfluidico in polidimetilsilossano PDMS 9 btc in usd la geometria porosa desiderata tramite il software CAD Computer-Aided Drafting 18, costituito da una matrice di cerchi cioè l'ostacolo impermeabile al flussodescritta dalle dimensioni del raggio e dalle coordinate del centro.

Un canale di osservazione senza ostacoli vicino all'uscita facilita l'acquisizione di BTC. NOTA: In alternativa, gli stampi possono anche essere ordinati da un impianto di microfabbricazione dedicato. Per ottenere un flusso di fluido eterogeneo nel piano orizzontale, è importante progettare lo spessore della camera microfluidica dello stesso ordine di grandezza della dimensione media della gola dei pori. Tuttavia, assicurarsi che le dimensioni del dispositivo microfluidico siano adatte per l'osservazione al microscopio ad esempio, lavorare su diapositive al microscopio.

Lavorare in condizioni pulite ed evitare il più possibile la polvere. Mescolare i due reagenti in un contenitore monouso pulito e applicare il vuoto mbar per 30 minuti per rimuovere l'aria disciolta e le bolle dal PDMS viscoso.

Posizionare lo stampo in una piastra di Petri mm di diametro, 15 mm di altezza.

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Versare il PDMS sullo stampo all'altezza desiderata ad esempio, mm. NOTA: Ai fini della visualizzazione, la luce dovrebbe essere in grado di passare attraverso il PDMS, quindi è auspicabile uno strato sottile tra 2 mm e 5 mm. Rimuovere lo stampo dal forno e lasciare raffreddare il dispositivo microfluidico a temperatura ambiente. Una volta raffreddato, rimuovere con cura la porzione desiderata di PDMS con un bisturi. NOTA: Forti pressioni sullo stampo si traducono in fratture dello stampo.

Non toccare il PDMS a mani nude, poiché le impronte digitali influenzeranno la trasparenza ottica.

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Sigillare temporaneamente la parte inferiore del canale PDMS dove è stata incisa la geometria desiderata con il nastro adesivo. Con un punzonatore per biopsia da 0,5 mm di diametro, perforare il canale microfluidico per creare un'ingresso e una presa che si adattano ai tubi da 0,5 mm diametro interno. I canali di ingresso e di uscita non possono essere effettuati dopo che il PDMS è stato sigillato sul vetro.

Sigillare il canale microfluidico tramite incollaggio al plasma di ossigeno utilizzando il generatore ad alta frequenza legame al plasma, Tabella dei materiali. Per questo, pulire uno scivolo di vetro silicato 25 mm x 75 mm con etanolo e lasciarlo asciugare. Rimuovere il nastro dal canale PDMS e posizionare il canale con il lato poroso rivolto verso l'alto.

Trattare lo scivolo di vetro silicato e le superfici PDMS con plasma per circa 45 s a temperatura ambiente. Rimuovere il dispositivo microfluidico dalla specifiche fori filettati btc calda e raffreddarlo a temperatura ambiente. Collegare l'ingresso del canale PDMS con i tubi. Applicare il vuoto per 30 minuti per rimuovere l'aria dal PDMS, che è quasi impermeabile ai fluidi ma permeabile al gas.

Preparazione di un dispositivo fluido in poli metacrilato metile Progettare la geometria desiderata con il software CAD. Se del caso, assicurarsi che le dimensioni siano adatte per l'osservazione al microscopio ad esempio, dimensioni di una piastra standard da 96 pomp porsi in combinazione con un supporto appropriato.

Un disegno tecnico di esempio è fornito nella figura 1A. Praticare 12 fori filettati M5. Questo servirà commercio bitcoin per litecoin gdax base del dispositivo fluido.

NOTA: Le dimensioni del dispositivo fluido devono essere regolate per adattarsi allo stadio del microscopio e alla distanza focale.

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Un disegno tecnico è fornito nella figura S1. Questo servirà come coperchio del dispositivo fluido. NOTA: È consigliabile l'esperienza nella micro-fresatura; gli autori utilizzano il supporto di un workshop specializzato. Vite base specifiche fori filettati btc coperchio insieme utilizzando i 12 fori filettati.

Installazione del distributore automatico NOTA: I distributori di liquidi disponibili in commercio sono costosi e spesso non offrono la flessibilità di erogare direttamente dal deflusso del dispositivo fluido. Pertanto, si giorno di negoziazione criptovaluta reddit di assemblare un sistema di erogazione robotico economico e flessibile da un robot plotter XY tavolo dei materiali.

Per erogare il deflusso dal dispositivo fluido in piastre a 96 pozzetti, montare il distributore robotico su una piastra PMMA e cavità di lavorazione di 85,8 x mm con una profondità di 1 mm per contenere diverse piastre di pozzo Collegare il tubo di deflusso del dispositivo fluido al braccio robotico del distributore. Bitcoin bux dispenser.

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L'utilizzo di otto piastre di pozzo 96 consentirà di far funzionare l'esperimento per più di 6 ore con un totale di punti dati. Inoltre, si noti che le cellule taggate da GFP possono perdere il loro segnale fluorescente dopo la fissazione usando la formaldeide.

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Analizzare il trasporto batterico utilizzando dispositivi microfluidici PDMS Posizionare il dispositivo microfluidico PDMS precedentemente saturo con il buffer di motilità sullo stadio del microscopio.

Utilizzare il nastro adesivo per fissare i tubi per ridurre al minimo il disturbo del flusso durante il movimento dello stadio. Spostare lo stadio del microscopio nel canale di osservazione vicino alla presa. Utilizzando la microscopia a campo luminoso o il contrasto di fase, mettere a fuoco il centro del canale di osservazione e regolare l'ingrandimento per visualizzare singole cellule batteriche.

Passare le impostazioni del percorso della luce alla microscopia a fluorescenza e regolare il tempo di esposizione della fotocamera per risolvere singole cellule batteriche ad esempio mso in modo che i segnali di fluorescenza delle cellule siano almeno 3 volte più forti del rumore di fondo. Quindi, inserire il tubo di ingresso in un tubo da 2 ml contenente la sospensione batterica. Scansiona la sezione trasversale dell'intero canale di osservazione registrando un'immagine composita ogni 2 minuti, per l'intera durata dell'esperimento.

Elaborazione di base delle immagini NOTA: L'obiettivo di specifiche fori filettati btc routine di elaborazione delle immagini di base è contare il numero di batteri nelle immagini registrate. Le procedure di lavorazione ottimali dipendono dalle specifiche tecniche del microscopio e della telecamera, nonché dalle proprietà di fluorescenza del ceppo batterico utilizzato nell'esperimento e devono quindi essere regolate.

Esportare innanzitutto le immagini in. Rimuovere il rumore della fotocamera, che è una variazione casuale dell'intensità dei pixel nelle immagini e corretto per l'aberrazione ottica.

Ritagliare le immagini in un'area di interesse.

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Identificare un valore di soglia intensità in pixelin modo che i valori al di sopra della soglia includano cellule batteriche.

Sottrarre da ogni immagine la soglia definita sopra. Binarizzare l'immagine risultante, in modo che le cellule batteriche prendano un valore pari a 1, mentre lo sfondo assume un valore pari a 0.

Rimuovere i cluster con un'area più piccola della dimensione più piccola delle cellule batteriche. Sommare l'immagine binarizzata per ottenere il numero totale di pixel dei cluster rimanenti. Dividi il numero di pixel per la dimensione media specifiche fori filettati btc pixel di una cella batterica: fornisce una stima del numero totale di cellule. Conoscendo la profondità di vista e l'area di indagine, i conteggi delle trasformazioni in concentrazione particelle mL È fondamentale identificare la concentrazione della sospensione batterica iniettata.

Per fare questo, iniettare con una siringa 1 ml di sospensione di coltura batterica nel canale di osservazione di un dispositivo microfluidico pulito. Registrare l'immagine e calcolare la concentrazione batterica influente C0 specifiche fori filettati btc descritto sopra da 6. Analizzare il trasporto batterico sulla scala dei pori Al fine di analizzare le velocità locali e le traiettorie dei batteri trasportati attraverso la matrice porosa, spostare lo stadio del microscopio nella regione di interesse e regolare la messa a fuoco al centro del dispositivo microfluidico.

Impostare il microscopio sul campo luminoso o sul contrasto di fase. NOTA: Questo solo nel caso in cui il segnale di fluorescenza della cellula batterica non consenta di registrare immagini a un tempo di esposizione inferiore al tempo batterico medio, altrimenti utilizzare la microscopia a fluorescenza. Registra immagini time-lapse, al momento dell'esposizione che cattura lo spostamento dei batteri più breve dello spostamento medio su un numero di pixel inferiore alle dimensioni dell'oggetto e che ottimizza il rilevamento delle cellule batteriche ad esempio l'esposizione di 20 ms e le immagini registrate ogni 50 ms.

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